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人外周血单核来源树突状细胞的制备实验方案

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2026-06-11

一、PBMC复苏

复苏冻存的PBMC,室温300g离心5min。弃去上清,使用完全培养基RPMI 1640(41402ES)(含10% FBS40132ES和1%双抗60162ES)重悬细胞,并进行细胞计数与活率检测(活率应大于95%)。

 

二、单核细胞分选

方法A:贴壁纯化法(简便,适合常规实验)

1. 铺板:将分离得到的单个核细胞用含血清的完全培养基重悬,调整细胞密度至约1×106−2×106cells/mL,接种于6孔培养板中。

2. 贴壁:将培养板置于37℃、5% CO₂培养箱中静置培养2小时。此步骤利用单核细胞易贴壁的特性,使其与悬浮的淋巴细胞分离。

3. 去悬浮:轻轻吸弃培养基中的悬浮细胞(主要为淋巴细胞),并用温热的PBS(41403ES)轻轻洗涤培养孔1-2次,剩余的紧密贴壁细胞即为单核细胞。

 

方法B:CD14 磁珠分选法(高纯度,适合功能实验)

1. 重悬:PBMC 调整浓度至1×10⁸ cells/mL,用预冷分选缓冲液洗涤1次(4℃,300×g,8 min)。

2. 磁珠标记:将PBMC细胞加入分选磁珠,4℃孵育 30 min,轻柔混匀。

3. 磁分离:分选柱用3倍体积分选缓冲液润洗,加入细胞悬液,收集未结合细胞;用分选缓冲液洗柱3次,洗脱结合的CD14⁺单核细胞(纯度≥95%)。

 

三、单核细胞诱导为未成熟树突状细胞

1. 接种:用完全培养基RPMI 1640(含10% FBS和1%双抗)将分选后的CD14+细胞浓度调整至1-2×106 cells/mL。按每孔1 mL接种于24孔板中。

2. 诱导:立即加入重组人细胞因子IL-4(90105ES,50ng/mL)和GM-CSF(91102ES,100ng/mL),将24孔板(84013ES)置于37℃、5% CO2的培养箱中开始培养;

3. 观察:培养48h后,在显微镜下观察细胞状态。

4. 换液:若细胞贴壁良好:轻柔吸弃一半旧培养基,再缓慢加入等体积、含有相同浓度IL-4和GM-CSF的新鲜完全培养基;若细胞贴壁不佳或大量悬浮:无需弃去旧液,直接补加适量含有相同浓度细胞因子的新鲜完全培养基。继续培养:完成换液/补液后,将细胞继续培养72小时。形态观察:出现典型树突状突起,为未成熟MoDC(iMoDC)。

 

四、未成熟树突状细胞诱导为成熟树突状细胞

1. 换液:轻柔吹打收集的上述未成熟树突状细胞,300g离心10分钟。弃去上清。用新鲜完全培养基重悬细胞,并将密度调整至5×105cells/mL。

2. 接种:将细胞悬液接种至新的24孔板中,并加入成熟诱导因子混合物:TNF-α(90635ES,10 ng/mL)、IL-1β(90101ES,10 ng/mL)、IL-6(90107ES,50 ng/mL)和PGE2(60810ES,1μg/mL)。将细胞置于37°C、5% CO₂培养箱中继续培养48小时。培养结束后,即可获得成熟的树突状细胞,用于后续实验。

3. 形态观察:随着细胞成熟,细胞会逐渐变成悬浮状态,细胞体积增大,表面突起变得更加细长、明显,呈典型的“树突状”。

 

五、细胞收获与鉴定

1. 收获:收集上清中的悬浮细胞,贴壁残留细胞用预冷TrypLE Express(40134ES)消化 5 min,轻轻吹打收集,合并后用PBS洗涤2次(300×g,10 min)。

2. 计数与活力:台盼蓝染色(40207ES),活细胞率需≥85%。

3. 表型鉴定(流式细胞术)

未成熟DC标志:CD11c⁺、CD14⁻、CD80⁻/low、CD86⁻/low、MHC II⁺、CD83⁻。

成熟DC标志:CD83⁺、CD80⁺、CD86⁺、HLA-DR⁺(MHC II)、CD14⁻。

 

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重组人IL-4:抑制单核细胞向CD14+巨噬细胞分化,从而诱导其分化为未成熟DC

重组人IL-6、重组人TNF-α和重组人IL-1β:三因子组合可诱导DC的完全成熟

 

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HiActi® Recombinant Human IL-4 Protein 重组人白介素-4

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41403ES

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40132ES

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40134ES

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