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离心柱法 | 大肠杆菌RNA提取

146

2026-04-10

实验所用试剂设备清单

货号

产品名称

19301ES50

MolPure® Bacterial RNAKit 细菌RNA提取试剂盒

10402ES

溶菌酶

无水乙醇

 

实验前准备

1.自备设备和试剂:台式离心机、振荡仪、水浴锅或金属浴,1.5 mL RNase-free 离心管,无水乙醇等。

2.首次使用前,在漂洗液W*瓶中加入4倍体积的无水乙醇,充分混匀后使用,并做好标记。如果发现漂洗液W*由于运输或保管不当造成容量严重不准,请用量筒定容后再加入4倍体积的无水乙醇。每次使用后将瓶盖盖紧,以保持漂洗液W*中的乙醇含量。

3.首次使用前,称取1 mg溶菌酶(19301-A,产品货号:10402ES)溶于1 mL缓冲液TE(pH 8.0),充分混匀,即为1 mg/mL溶菌酶工作液。工作液分装-20℃保存,数周内稳定。

 

操作步骤

1.取1 mL大肠杆菌培养液(约5×105),12000 rpm离心2 min,弃上清。注:菌体不宜过量,过量会严重降低产量。起始处理量与细菌密度、种类等相关。注:上清残留量不宜超过20 μL。

2.针对革兰氏阴性菌:加入100 μL 1mg/mL溶菌酶工作液。涡旋振荡10 sec,室温孵育2 min。重复振荡孵育3次。

3.短暂离心收集细胞,弃上清。

4.涡旋振荡重悬分散细胞。加入500 μL裂解液LB,反复吹打混匀,并剧烈涡旋振荡至无明显不溶物。注:若处理后,仍有不溶物,可12,000 rpm离心2 min,取上清液进行下一步。

5.将DNA清除柱B4套入2 mL收集管中,备用。

6.加入上述裂解物至DNA清除柱B4中,12000 rpm离心1 min,保留滤过液。注:离心后,若滤膜仍有液体残留,可延长离心时间至5 min。

7.加入250 μL无水乙醇,立即吹打混匀。注:可能会形成絮状沉淀,属于正常现象。

8.将上述混合物加入RNA吸附柱B4中,12000 rpm离心1 min,弃掉废液。注:混合液每次最大加入体积700 μL,可分多次离心。

9.加入500 μL去蛋白液PL,12000 rpm离心30 sec,弃掉废液。

10.将RNA吸附柱B4放回收集管中,加入500 µL漂洗液W*,12000 rpm离心30 sec,弃废液。注:确保漂洗液W*已添加无水乙醇。重复一遍步骤10。

11.将RNA吸附柱B4放回收集管,空柱12000 rpm室温离心2 min,以除去残留的漂洗液W*。

12.将RNA吸附柱B4放入新的1.5 mL RNase-free离心管中,在RNA吸附柱B4中央加入50 µL RNase-free H2O,室温放置1 min。然后12000 rpm离心1 min。收集滤液,即为RNA溶液。

13.样品可置于-20℃短期保存,-80℃长期保存。

 

质检结果—RNA浓度和纯度

样本序号

浓度(nanodrop)ng/μL

A260/A280

A260/A230

1

123.949

2.15

1.09

2

241.394

2.15

2.16

3

198.421

2.16

1.56

4

171.154

2.16

1.88

5

220.891

2.15

2.16

6

195.429

2.16

2.24

7

187.918

2.16

1.83

8

207.775

2.15

2.28

 

质检结果—RNA完整度分析

 

数据来源:北京某高校老师

 

实验结论

采用永利3044集团官网离心柱法细菌RNA提取试剂盒(19301ES50)提取8个大肠杆菌样本,通过Nanodrop检测RNA的浓度和纯度、琼脂糖凝胶电泳检测RNA的完整度,结果显示:提取的大肠杆菌RNA浓度较高(除第一个样本由于操作失误降解),其余7个样本完整度较好,28S:18S大约2:1,能够满足后续RNA-seq要求。

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