外泌体核酸提取的原理及应用
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2026-03-13
外泌体作为细胞间通信的 “纳米信使”,正逐渐揭开细胞间对话的全新维度,尤其在疾病诊断与治疗领域展现出巨大的潜力。其携带的核酸物质更是隐藏着疾病发生发展的关键信息,成为近年来科研与临床关注的焦点。
一、外泌体背景:细胞的“微型快递”
1. 什么是外泌体?
外泌体是细胞分泌到胞外的一种纳米级囊泡,直径通常在 30-150 nm 之间。它们具有双层脂质膜结构,几乎所有细胞类型(如免疫细胞、肿瘤细胞、干细胞等)都能分泌,广泛存在于血液、尿液、唾液、乳汁、脑脊液等各种体液中。
2. 形成机制:从“垃圾袋”到“信使”
早期,外泌体曾被认为是细胞排出废物的“垃圾袋”。但随着研究的深入,科学家发现其形成是一个高度调控的主动过程:
- 内吞起始:细胞膜向内凹陷形成早期内体。
- 多泡体生成:早期内体膜继续向内出芽,形成包含多个腔内小泡(ILVs)的多泡体(MVBs)。这些小泡就是未来的外泌体。
- 分泌释放:MVBs有两种命运,要么与溶酶体融合被降解,要么与细胞膜融合,将其中的小泡释放到细胞外,成为外泌体。这一过程受ESCRT复合物、Rab蛋白(如Rab27a/b)等关键分子的调控。
Fig.1 外泌体的生物发生、组成及内化
(图片来源于文献,文末标注)
二、外泌体内的核酸:珍贵的“生命密码”
1. 丰富的内容物
外泌体就像一个微型的“生物宝库”,其内部包裹着来自母细胞的多种生物活性分子,包括:
- 蛋白质:如四跨膜蛋白(CD9, CD63, CD81)、热休克蛋白等,常作为外泌体的标志物。
- 脂质:构成其稳定的双层膜结构。
- 核酸:这是外泌体功能的核心,包括mRNA、miRNA、lncRNA、circRNA以及DNA片段
2. 核心焦点:核酸类型及其作用
在外泌体携带的众多核酸中,microRNA (miRNA) 最受关注。不同于游离在体液中易被酶解的核酸,外泌体内的核酸被双层脂质膜严密保护,能抵抗RNase的降解,在极端环境下仍能保持稳定。外泌体miRNA并非随机包装,而是经过细胞主动筛选。一旦进入受体细胞,它们能像“基因开关”一样,通过结合靶mRNA抑制其翻译或诱导降解,从而调控受体细胞的基因表达、增殖、分化甚至凋亡。
除了miRNA,外泌体还携带mRNA(可被翻译成蛋白质)、环状RNA(circRNA,作为miRNA海绵)以及突变型DNA(如肿瘤特异性突变),共同构成了复杂的调控网络。
3. 研究外泌体内的核酸组成具有重要意义
外泌体就像一个个从细胞派出的“侦察兵”或“信使”,它们携带的核酸信息实时反映着来源细胞的生理或病理状态。通过分析体液中的外泌体核酸,我们能够:
- 窥探疾病本质:肿瘤细胞分泌的外泌体携带着与肿瘤发生、转移、耐药相关的核酸。分析这些核酸,可以无创地了解肿瘤的基因突变谱、分型等信息。
- 实现早期诊断:许多疾病在出现明显症状前,其细胞分泌的外泌体核酸图谱就已发生变化。这使得基于外泌体核酸的“液体活检”成为可能,有望在极早期发现癌症等重大疾病。
- 监测治疗效果:通过动态监测患者治疗前后外泌体中特定核酸(如耐药相关miRNA)的水平变化,医生可以及时评估疗效,调整治疗方案
三、外泌体的临床应用:从诊断到治疗
基于外泌体核酸的巨大潜力,科学家们正在积极探索其在临床上的应用,主要集中在两大方向:
1. 作为疾病诊断和预后的新型生物标志物
传统的组织活检具有侵入性、取样困难、无法反映肿瘤整体情况等局限。而只需抽取一管血或尿液,从中分离出外泌体,分析其内部的核酸,就能获得大量诊断信息。
- 癌症诊断:多项研究表明,特定miRNA在外泌体中的表达水平与多种癌症相关。例如,血浆外泌体中的某些miRNA组合(如miR-21, miR-141等)能有效区分卵巢癌患者与良性肿瘤患者或健康人。肺癌、结直肠癌、胰腺癌等的相关研究也已取得了显著进展。
- 预后判断:某些外泌体miRNA的水平与癌症患者的生存期密切相关,可作为独立的预后指标。例如,在前列腺癌中,外泌体miR-1290和miR-375的水平与患者的预后不良相关。
- 其他疾病:除了癌症,外泌体核酸在神经退行性疾病(如帕金森病)、肾脏损伤等疾病中的诊断价值也备受关注。
2. 作为天然药物载体进行基因治疗
外泌体不仅自身携带有用信息,其天生的特性——低免疫原性、高生物相容性、能穿透生物屏障(如血脑屏障)、可靶向特定细胞——使其成为理想的药物递送“天然纳米载体”。
- 递送siRNA:小干扰RNA(siRNA)可以特异性沉默致病基因,但其本身不稳定且难以进入细胞。科学家已经成功将靶向特定癌基因(如KRAS)的siRNA装载进外泌体,实现了对胰腺癌等肿瘤的有效抑制。
- 递送miRNA mimics或抑制剂:对于在肿瘤中表达下调的抑癌miRNA(如miR-34, let-7),可以通过外泌体向其输送“模拟物”来恢复其功能;而对于过表达促癌作用的“oncomiR”(如miR-155),则可通过外泌体递送其“抑制剂”来阻断其作用。
- 递送mRNA和CRISPR/Cas9系统:装载功能性mRNA的外泌体可以在受体细胞中产生治疗性蛋白。此外,利用外泌体递送CRISPR/Cas9基因编辑系统,为从根本上纠正致病基因提供了可能。
Fig.2 外泌体表面的化学和生物修饰
四、永利3044集团官网外泌体研究相关产品推荐
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产品定位 |
产品名称 |
货号 |
规格 |
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外泌体提取 |
Hieff® Quick exosome isolation kit(for Cell Culture Media) 细胞培养上清外泌体快速抽提试剂 |
25 mL/50 mL |
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Hieff® Quick exosome isolation kit Plus(for Cell Culture Media) 细胞培养上清外泌体快速提取分离试剂盒 |
10 T/20 T |
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Hieff® Quick exosome isolation kit(for Serum/Plasma)血清/血浆外泌体快速抽提试剂盒 |
30 mL |
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Hieff® Quick exosome isolation kit Plus(for Serum/Plasma) 血清/血浆外泌体快速提取分离试剂盒Plus |
30 T |
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Hieff® Quick exosome isolation kit Plus (for Urine) 尿液外泌体快速抽提试剂盒Plus |
5 T/20 T |
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Hieff® Quick exosome isolation kit Plus(for Body Fluids) 体液外泌体快速提取分离试剂盒Plus |
10 T/30 T |
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Hieff® high purity exosome isolation kit( for Serum/Plasma)高纯度血清/血浆外泌体快速抽提试剂盒 |
10 T/20 T |
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外泌体鉴定 |
Exosome Protein Assay kit for Western Blot 外泌体蛋白检测试剂盒 |
5 T |
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外泌体培养 |
Hieff® Exosome Serum-free Medium (for MSC) 外泌体无血清培养基 (间充质干细胞专用) |
50 mL/500 mL |
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Exosome-depleted Fetal Bovine Serum 无外泌体胎牛血清 |
50 mL |
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外泌体抑制剂 |
GW4869外泌体抑制剂 |
2mg/5mg/10mg |
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外泌体DNA/RNA分离 |
Exosome RNA Isolation Kit 外泌体RNA分离试剂盒 |
30 T/50 T |
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Exosome DNA Isolation Kit 外泌体DNA分离试剂盒 |
42119ES |
30 T/50 T |
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外泌体标记 |
Hieff® exosome tracker kit(for red fluorescence)外泌体红色荧光示踪试剂盒 |
20 μL(1mM) |
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Hieff® exosome tracker kit(for green fluorescence)外泌体绿色荧光示踪试剂盒 |
20 μL(1mM) |
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DiO (DiOC18(3)) 细胞膜绿色荧光探针 |
10 mg/25 mg |
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DiI (DiIC18(3)) 细胞膜橙红色荧光探针 |
10 mg |
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DiR Iodide (DiIC18(7)) 细胞膜深红色荧光探针 |
25 mg |
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DiD Perchlorate (DiIC18(5)) 细胞膜红色荧光探针 |
25 mg |
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Celltracker CM-DiI 活细胞示踪剂CM-DiI (红色) |
1/2×50μg |
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CFDA, SE 细胞增殖示踪荧光探针 |
25 mg |
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Calcein, AM, Ultrapure Grade 钙黄绿素,超纯级 |
1/2×50μg |
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外泌体相关抗体 |
Calnexin Rabbit pAb |
50 μL/100 μL |
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CD9 Rabbit pAb |
50 μL/100 μL |
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CD9 Rabbit mAb |
50 μL/100 μL |
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CD63 Rabbit pAb |
50 μL/100 μL |
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CD63 Rabbit mAb |
50 μL/100 μL |
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CD81 Rabbit mAb |
50 μL/100 μL |
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Hsp70 1A Mouse mA |
50 μL/100 μL |
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TSG101 Rabbit pAb |
50 μL/100 μL |
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TSG101 Rabbit mAb |
50 μL/100 μL |
参考文献:
[1] ZHANG J, LI S, LI L, et al. Exosome and exosomal microRNA: Trafficking, sorting, and function[J]. Genomics, Proteomics & Bioinformatics, 2015, 13(1): 17-24.
[2] SKOTLAND T, HESSVIK N P, SANDVIG K, et al. Exosomal lipid composition and the role of ether lipids and phosphoinositides in exosome biology[J]. Journal of Lipid Research, 2019, 60(1): 9-18.
[3] ZHANG Y, LIU Q, ZHANG X, et al. Recent advances in exosome-mediated nucleic acid delivery for cancer therapy[J]. Journal of Nanobiotechnology, 2022, 20: 279.
[4] DOYLE L M, WANG M Z. Overview of extracellular vesicles, their origin, composition, purpose, and methods for exosome isolation and analysis[J]. Cells, 2019, 8(7): 727.





