一步法mRNA体外转录:原理与实验流程详解
19523
2026-03-13
在mRNA技术飞速发展的今天,一步法体外转录已从新兴技术逐步成熟,成为临床级mRNA生产领域的主流行业标准。它将复杂的转录、加帽过程整合在单管、单步反应中完成,大幅简化了mRNA合成流程,提升了工艺可控性。

加帽方法对应不同路线
实验核心原理
1.Cap1-GAG等帽子类似物作为转录起始底物,可被T7 RNA聚合酶识别并整合到mRNA 5' 端。
2. T7 RNA聚合酶不再以 GTP为第一个底物,而是直接以Cap1-GAG三核苷酸为起始单元,在转录启动时一步形成完整Cap1结构,无需后续酶促修饰。永利3044集团官网采用低dsRNA突变型T7 RNA聚合酶,dsRNA副产物相比野生型降低10倍以上,显著降低免疫原性。
3. 修饰核苷酸(可选)
体系兼容N1-Me-pUTP、pseudo-UTP等修饰核苷酸,进一步降低免疫原性、提升翻译效率。
实验流程
以下是基于永利3044集团官网T7 High Yield RNA Synthesis Kit for Co-transcription (low dsRNA)的标准化实验流程(以20 μL反应体系为例)。
1. DNA模板制备(模板设计时加预定长度poly A尾)
带有双链T7启动子的线性化质粒或 PCR扩增产物都可以作为T7 RNA polymerase体外转录模板, 模板可以用TE缓冲液或RNase-free H2O溶解。
A.质粒模板
将目的DNA插入含有T7启动子的质粒载体中, 限制性内切酶处理,待完全线性化后进行纯化。以Bsp QI为例, 质粒线性化常用的反应体系:
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组分 |
体积(uL) |
|
质粒DNA |
1ug |
|
10xDigestion Buffer 3 |
5 |
|
BspQ1(10 U/L) |
5 |
|
RNase-free H2O |
Up to 50 |
50℃孵育1 h。
注:①环状质粒由于没有有效的终止, 会转录出不同长度的RNA产物, 为了得到特定长度的RNA, 质粒必须完全线性化。
②质粒线性化所选限制性内切酶需要在启动子区域右侧、插入DNA片段的下游, 且在插入 DNA片段中没有该限制性内切酶识别位点。选择的限制性内切酶要能形成有义链5' 端突出结构或者平末端。
③为了避免蛋白及盐离子等对体系的影响, 质粒线性化后建议纯化后再作为模板进行体外转录。
B . PCR产物模板
带 T7 启动子的PCR产物可以作为体外转录模板。首先将T7启动子序列加在有义链的上游引物的5' 端, 然后在高保真酶作用下扩增含T7启动子的DNA模板, 随后进行转录。PCR产物可以不经纯化直接作为模板, 但纯化后会得到更高的RNA产出。
注:① PCR产物作为模板, 必须电泳确认产物特异性及浓度, 建议20μL反应体系投入2-5μL PCR产物。
②为了得到更多高品质RNA,推荐PCR产物胶回收之后再作为模板进行体外转录。
③长转录本(>1000nt) , 建议使用质粒线性化模板进行转录。
2. 体外转录 (以20uL反应体系为例)
(1)室温解冻10XTranscription Buffer和4种NTP(ATP、CTP、GTP、 UTP),充分混匀后, 短暂离心;10XTranscription Buffer置于室温, NTP置于冰上备用。
(2)分别将T7 RNA Polymerase
Inorganic pyrophosphatase和Murine RNase Inhibitor混匀,短暂离心,置于冰上备用。
2 .2室温配制共转录加帽体系
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组分 |
体积(uL) |
终浓度 |
|
RNase-free H2O |
Up to 20 |
- |
|
10x Transcription Buffer |
2 |
1x |
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CTP/GTP/ ATP/UTP (100 mM each) |
2 each |
10 mM each |
|
Cap Analog (100mM) |
2 |
10 mM |
|
模板DNA |
1ug |
- |
|
Murine RNase Inhibitor (40 U/uL) |
0.5 |
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Pyrophosphatase,Inorganic (0.1 U/uL) |
0.4 |
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T7 RNA Polymerase (250 U/uL) |
1-1.6 |
|
该共转录法反应体系: 永利3044集团官网可以提供货号Cat#16222ES和10634ES的商品化产品, 该产品包含一步法需要的所有物料。
注:
①反应体系在室温配置。防止温度低引起亚精胺沉淀高浓度DNA模板。
②短转录本(<100nt), 模板可使用2μg, 转录时间增至4-8个小时。
③为了提高RNA质量, 建议使用质粒线性化模板进行转录。
④使用试剂、容器等无 RNase污染。
⑤ 20μL转录体系可获得100-200μg RNA, 若想获得更多RNA, 可等比例放大反应体系, 不影响反应。
⑥ Cap1-GAG用于起始序列为5' AG3' 的共转录加帽, 请在质粒设计时充分考虑。
2.3 37℃孵育
将上述反应液混合均匀, 短暂离心, 置于37℃孵育2-3 h。
转录反应完成后, 每管加入1μL DNase I(RNase-free), 混匀后, 短暂离心, 置于37℃孵育15-30min以去除模板DNA。
转录获得的RNA可以选用RNA cleaner磁珠进行纯化 (Cat#12602), 也可以采用氯化锂沉淀法或柱纯化等, 以去除蛋白、游离的核苷酸。纯化后的RNA经电泳检测后可进行下游实验或存储于-80℃。
4. RNA定量
A. 紫外吸收法
游离核苷酸会影响定量的准确性, 采用此方法前请先进行RNA纯化。然后通过测定产物的A260读数来确定RNA的产量。
B. 染料法
用 Ribo Green染料进行RNA定量, 游离核苷酸不会影响定量,可以对纯化或未纯化的反应产物中的RNA进行准确定量。
5. RNA大小及质量检测
A. 琼脂糖电泳法 为了确定RNA大小,完整度以及质量,可以选择琼脂糖凝胶电泳或聚丙烯酰胺凝胶电泳进行检测。
B. Agile nt 2100/5200 Bioanalyzer检测法 可以用来评估RNA完整度及质量, 它仅需要少量的RNA进行分析, 高品质的RNA呈现明显且锐利的峰。
永利3044集团官网:助力一步法mRNA体外转录高效落地
核心原料已完成DMF备案,满足临床前研究、IND申报及商业化生产合规要求。
50mL大体积共转录数据
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H2O |
To 50 ml |
终浓度 |
|
10x Transcription Buffer |
5ml |
1x |
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A/G/C/m1N-ΨTP(各100mM) |
各2.5ml |
5nM |
|
GAG Trimer (100mM) |
2ml |
4nM |
|
模板(L-Luciferase/BspQ1) |
2.5mg |
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|
T7 RNA Polymerase Mix |
5ml |
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磁珠 |
Cat#12602 |
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转录反应液投入量(uL) |
20 |
|
磁珠投入量 |
100uL |
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纯化后浓度(ng/L) |
4834.733 |
|
lucifersae mRNA产量(ug) |
106.36 |

一步法 mRNA 体外转录,是通往高效、低免疫原性mRNA的必经之路。选择永利3044集团官网的核心试剂,您不仅获得了高质量的产品,更获得了一套经过市场验证的成熟工艺,加速您的mRNA药物从实验室走向临床,造福更多患者。
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产品名称 |
货号 |
规格 |
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T7 High Yield RNA Synthesis Kit for Co-transcription (low dsRNA) |
10634ES |
10 T/50T/100T/500T |
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16222ES |
10 T/50T/100T/500T |
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|
10623ES |
10 T/50T/100T/500T |
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|
10633ES |
10 T/50T/100T/500T |





