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肾脏类器官培养案例 | 人肾脏类器官培养手册

14331

2023-03-23

 

背景介绍

肾脏是人体中重要器官之一,具有清除代谢废物,维持电解质平衡等生理功能,保证机体内环境的稳定。肾脏类器官(kidney organoid)是肾脏功能的3D模型,有利于人类肾脏疾病的建模,大多由多能人类干细胞(PSC)在体外经诱导生成,能够表达出和人肾单位相似的各类结构,如肾小球足细胞、近端小管、远端小管、集合管等。

 

 

肾脏类器官的培养方案

 

 
 
 
文献一

我们根据Nat Protoc.[1]发表的文章,整理了人类多能干细胞生成肾脏类器官的培养方案。

 图1.hPSC分化为肾脏类器官的过程(PMID: 28005067)[1]

 

 
 
 
1、人多能干细胞培养

hPSC接种到包被了无LDEV低生长因子基底膜基质的6孔板上,用ReproFF2培养基(含有10 ng/mL FGF2)培养。健康的未分化hPSC显示出边界清晰的圆形集落形态,使用iPS细胞的解离溶液分离健康的未分化hPSC,每七天传代。

 

 
 
 
2、人多能干细胞的分化

当细胞密度达到80%时,使用Accutase消化细胞,用ReproFF2培养基(含10 μM Y-27632(Cat# 53006ES)Y-27632 dihydrochloride(Cat# 52604ES))重悬,接种到包被了无LDEV低生长因子基底膜基质的24孔板上,培养3天,更换为Advanced RPMI 1640培养基(含有1× L-GlutaMAX,3~10 μM CHIR-99021,5-25 ng/mL Noggin,100-500 nM Dorsomorphin)继续培养,每两天换液,直至细胞形态为松散形成的密集细胞团(一般需要96 h)。然后更换为Advanced RPMI 1640培养基(含有1× L-GlutaMAX,10 ng/mL activin A)继续培养2-3天。 

 

 
 
 
3、诱导hPSC分化为NPC

更换为Advanced RPMI 1640培养基(含有1× L-GlutaMAX,10 ng/mL FGF9)继续培养2天。

 

 

图2.hPSC分化过程中的形态变化(PMID: 28005067)[1]

 

Day 0,分化开始时未分化的hPSC (H9);Day 4,晚期原始条纹阶段;Day 9,肾单位祖细胞期. Day 14,肾囊泡期;Day 21,肾单位期;在第4天进行激活素A处理的细胞的最佳形态是可见松散密集的簇。

 

 
 
 
4、类器官诱导

 

4.1 NPC向肾脏类器官的分化(2D)

步骤3后更换为Advanced RPMI 1640培养基(含有1× L-GlutaMAX,10 ng/mL FGF9,3 μM CHIR-99021)继续培养2天;然后更换为Advanced RPMI 1640培养基(含有1× L-GlutaMAX,10 ng/mL FGF9)培养2-3天,如果观察到类似肾小泡的带有管腔的圆极化结构,则继续下一步。如果在3天内未观察到肾泡结构,则通过免疫染色确认LHX1是否表达;然后更换为Advanced RPMI 1640培养基(含有1× L-GlutaMAX)培养,每2-3天换液,肾脏类器官在至少长达3个月的分化中是稳定的,肾单位结构可以用显微镜识别。

  

4.2 hPSC向肾脏类器官的分化(3D)

步骤2后使用Accutase消化细胞,用Advanced RPMI 1640培养基(含有1× L-GlutaMAX,10 ng/mL FGF9,3 μM CHIR-99021)重悬后接种于超低吸附的圆底96孔板中,培养2天,然后更换为Advanced RPMI 1640培养基(含有1× L-GlutaMAX,10 ng/mL FGF9)继续培养2-3天,直到显微镜观察到肾泡状圆形结构。

 

图3.NPC和肾单位的免疫染色(PMID: 28005067)[1]

 

(a)分化第9天SIX2的免疫荧光显示NPC。比例尺:50 μm;(b)免疫荧光染色鉴别分化2D培养中第21天的肾单位结构。比例尺:50 μm;(c) 在3D培养中分化的第21天用冷冻切片识别肾单位结构,比例尺:50 μm;(d) 3D培养中第28天(左,比例尺:50 μm)和第21天(右,比例尺100 μm)肾单位的免疫染色,PODXL:一种足细胞标记物,LTL:一种近端小管标记物,CDH1:Henle环和远端小管标记物;(e)3D培养中第21天类器官的明场图像,箭头表示肾小球结构。

 

  

 
 
 
文献二

 Melissa H. Little团队于Nature Protocols发表研究,提出一种优化方案:通过延长分化周期并使用CDBLY2培养基,增强后肾祖细胞定向分化及肾单位祖细胞自我更新能力,从而从人多能干细胞高效构建近端肾小管功能强化的肾类器官[3]。

1. 细胞铺板与初始诱导(第0-5天)

将人多能干细胞(hPSCs)以每孔25,000个的密度接种于Laminin-521包被的培养板。第0天,在确认细胞状态良好、未出现自发分化且密度合适后,移除E8培养基,加入含6 µM CHIR-99021的E6培养基(1 mL/孔)。将细胞置于CO₂培养箱中培养,每48小时更换新鲜E6/CHIR培养基,持续至第5天。

2. FGF9诱导期(第5-8天)

第5天起,将培养基更换为添加200 ng/mL FGF9和1 µg/mL肝素的E6培养基,每2-3天换液。此阶段旨在促进后肾谱系定向分化。

3. CDBLY2扩增期(第8-13天)

从第8天开始,改用CDBLY2培养基进行每日换液,直至第13天。期间需持续镜检监测,确保细胞未发生上皮化,以保证后续三维培养的成功率。

4. 3D成熟类器官培养期(第13-27天)

吸除CDBLY2培养基,先用1 mL TrypLE Select清洗细胞,再加入新鲜TrypLE Select孵育3分钟。收集细胞后离心,将细胞微团(每孔3个)转移至Transwell膜表面。向Transwell下室加入含5 µM CHIR-99021的E6培养基,37°C孵育1小时完成CHIR脉冲处理。随后更换为含200 ng/mL FGF9和1 µg/mL肝素的E6培养基,继续培养至第18天。第18天后,改用不含FGF9肝素E6培养基,隔天换液,直至第27天获得成熟肾类器官。

图4 近端肾小管增强肾类器官构建流程

相关产品

产品名称

产品编号

规格

简介

Y-27632

53006ES

1 mg/5 mg/10 mg

ROCK抑制剂

CHIR99021

53003ES

2 mg/5 mg/10 mg

GSK-3α/β抑制剂

Dorsomorphin

53593ES

5 mg/25 mg

AMPK选择性抑制剂

human Noggin Protein

92528ES

5 μg/100 μg/500 μg

重组蛋白

human Activin A

91702ES

10 μg/100 μg/500 μg

重组蛋白

human FGF9

91305ES

5 μg/100 μg/500 μg

重组蛋白

human FGF10

91306ES

5 μg/100 μg/500 μg

重组蛋白

human FGF2

91330ES

10 μg/100 μg/500 μg

重组蛋白

Accutase细胞消化液

40506ES

100 mL

细胞消化液

肝素

738416ES

100 mg

细胞培养添加剂

 L-丙氨酰-L-谷氨酰胺(等同于GlutaMAX添加剂)

60701ES

100 mL

细胞培养添加剂

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参考文献

[1] Morizane R, et al. Generation of nephron progenitor cells and kidney organoids from human pluripotent stem cells. Nat Protoc. 2017 Jan;12(1):195-207.

[2] Little MH, et al. Generating Kidney from Stem Cells. Annu Rev Physiol. 2019 Feb 10;81:335-357.

 

 (本文中的实验方案基于已发表文献优化整理,内容仅供参考,实际实验条件可能因细胞系差异、实验室环境等因素需调整,建议用户在正式实验前进行预实验优化。)

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