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CRISPR基因编辑实验受阻?优质 Cas 蛋白是突破瓶颈的关键

9000

2026-01-07

自 2012 年首次亮相以来,CRISPR 技术凭借其高效精准的特性,已在基因功能研究、药物靶点筛选、遗传疾病治疗、癌症研究以及作物育种等多个领域取得突破性成果,成为推动生命科学发展的核心技术之一。

图1. CRISPR-Cas9介导的基因编辑机制[1]

然而,在实际实验操作过程中,众多研究者常常遭遇各类技术难题,导致实验进度受阻。CRISPR 实验中最为常见的痛点主要包括以下几方面:

  • 细胞毒性高:转染后细胞存活率低,难以获取足量且有效的实验样本,直接影响后续研究开展;

  • 编辑效率低:目标位点的编辑成功率低,阳性克隆筛选困难,耗时耗力;

  • 脱靶风险高:非目标位点易出现随机编辑情况,严重影响实验结果的准确性与可靠性,可能导致研究结论出现偏差。

深入探究这些痛点的根源,不难发现其与 Cas 蛋白的质量息息相关。纯度不达标的 Cas 蛋白易残留核酸酶、内毒素等杂质,正是引发细胞毒性高、编辑效率低、脱靶风险高等问题的核心原因[3]

针对上述痛点,我司依托永利3044集团官网发酵与纯化工艺开发平台、酶分析及质控平台,并结合UCF.ME® 超洁净酶生产平台,以严苛标准打造高纯度 Cas 蛋白系列产品,通过多维度、全方位的系统化质控流程,从源头保障产品品质。

以下为核心产品 Cas9 Nuclease(Cat#14701ES的详细参数,其各项指标均展示了严格质控下的卓越品质:

产品名称及货号

Product Name and Catalog Number)

Cas9 NucleaseCat#14701ES)

表达系统(Source)

E.coli

种属(Species)

Streptococcus pyogenes

分子量大小(Molecular Weight)

163 kDa.

浓度(Concentration)

10 mg/mL

纯度(Purity)(Bis-Tris PAGE)

≥95%

内毒素(Endotoxin)

10 EU/mg

E.coli菌体蛋白质(E.coli host protein)

<0.1 ppm

大肠埃希菌菌体DNA(E.coli host DNA)

<3 ng/mL

支原体检查(Mycoplasma examination)

阴性(Negative)

核酸外切酶(Exonuclease)

阴性(Negative)

切口酶(Nickase)

阴性(Negative)

RNase酶(RNase)

阴性(Negative)

磷酸酶(Phosphatase)

<0.0001 U

Cas9 Nuclease产品性能数据展示

A:体外切割测试:3批次体外切割活性均达98%以上。

B:体内基因敲除,敲除效率与进口品牌一致。

图2. Cas9 Nuclease体外切割活性及基因敲除效率结果

除核心 Cas9 蛋白外,永利3044集团官网还构建了覆盖基因编辑全流程的完整解决方案,产品体系贯穿 CRISPR 核心组件制备至效果检测全环节,全方位满足不同科研场景的多样化需求。

全系列高品质产品推荐

产品应用

产品定位

产品名称

产品货号

通用型

NLS的SpCas9

Cas9 Nuclease

14701ES

荧光观察/流式分选

EGFP荧光标签的SpCas9

NLS-Cas9-EGFP Nuclease

11364ES

基因调控

无剪切酶活性的Cas9

dCas9 Nuclease

11351ES

小分子量递送

Cas12a

ArCas12a Nuclease

14702ES

Cas12b

AapCas12b Nuclease

14808ES

sgRNA制备

sgRNA合成

Hifair® Precision sgRNA Synthesis Kit

11355ES

sgRNA纯化

Hieff NGS® RNA Cleaner

12602ES

参考文献

[1] Westermann L, Neubauer B, Köttgen M. Nobel Prize 2020 in Chemistry honors CRISPR: a tool for rewriting the code of life. Pflugers Arch. 2021 Jan;473(1):1-2.

[2] The Nobel Prize in Chemistry 2020, Retrieved October 7, 2020, from https://www.nobelprize.org/prizes/chemistry/.

[3] Pacesa M, Pelea O, Jinek M. Past, present, and future of CRISPR genome editing technologies[J]. Cell, 2024, 187(5): 1076-1100.

[4] Marraffini LA, Sontheimer EJ. CRISPR interference: RNA-directed adaptive immunity in bacteria and archaea. Nat Rev Genet. 2010;11(3):181-190.

[5] Makarova KS, Wolf YI, Iranzo J, et al. Evolutionary classification of CRISPR-Cas systems: a burst of class 2 and derived variants. Nat Rev Microbiol. 2020;18(2):67-83.

[6] Pickar-Oliver A, Gersbach CA. The next generation of CRISPR-Cas technologies and applications. Nat Rev Mol Cell Biol. 2019;20(8):490-507. 

[7] Jiang F, Doudna JA. CRISPR-Cas9 Structures and Mechanisms. Annu Rev Biophys. 2017;46:505-529.

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